000			10688namaa22004451i 4500
003			EG-GICUC
005			20260223112626.0
008			260213s2025 ua a|||frm||| 000 0 eng d
040			_aEG-GICUC _beng _cEG-GICUC _dEG-GICUC _erda
041	0		_aeng _beng _bara
049			_aDeposit
082	0	4	_a660.6
092			_a660.6 _221
097			_aM.Sc
099			_aCai01.12.25.M.Sc.2025.Kh.I
100	0		_aKhalid Wael Abdullatif Mohamed, _epreparation.
245	1	0	_aIn-vitro evaluation of hemostatic efficacy, anti-microbial activity, and cytotoxicity of aerogel derivatized-chitosan / _cby Khalid Wael Abdullatif Mohamed ; Supervised Prof. Dr. Emad El-Zayat, Prof. Maher Z. El-Sabaa, Prof. Dr. Mehrez El-Naggar.
246	1	5	_aالتقييم المعملي لكفاءة الإرقاء، والنشاط مضاد الميكروبات، ومستوي السمية للهلام الهوائي من مشتقات الكيتوزان
264		0	_c2025.
300			_a83 pages : _billustrations ; _c25 cm. + _eCD.
336			_atext _2rda content
337			_aUnmediated _2rdamedia
338			_avolume _2rdacarrier
502			_aThesis (M.Sc)-Cairo University, 2025
504			_aBibliography: pages 82-83.
520		3	_aThis thesis reports the design, fabrication, and evaluation of chitosan microflowers (CMF) embedded in gelatin (GE) sponges as multifunctional wound dressings that combine rapid hemostasis with broad-spectrum antimicrobial performance. CMF were produced through a modified one-pot route: ionotropic gelation of chitosan with tripolyphosphate (TPP) to form Cs–TPP nanocomplexes, followed by CaCl₂-driven anisotropic growth of calcium pyrophosphate on the chitosan surface to yield “micro-flower” architectures. Systematic optimization established 150 mM CaCl₂ and 125 g/L TPP as the optimum concentrations for well-defined flowers; deviating from this window generated irregular, non-flower morphologies. The formation mechanism involves TPP hydrolysis to P₂O₇⁴⁻ and subsequent growth of Ca₂P₂O₇ platelets on chitosan, building the hierarchical petals. CMF were incorporated into gelatin to obtain CMF0@GE (GE only), CMF1@GE, and CMF2@GE sponges. GE solutions were prepared at 50 °C (water bath; room-temperature preparation was not feasible) and cross-linked with 0.03% glutaraldehyde before lyophilization. SEM showed porous interconnected networks with CMF petals distributed through the matrix; EDS confirmed C, O, Na, P, and Ca (P ≈ 15.8%, Ca ≈ 9.5%); XRD verified calcium phosphate (Ca₃(PO₄)₂) phases. Density decreased and PBS uptake and BET surface area increased with CMF loading. TGA revealed ~15% mass loss at 50–200 °C (bound/free water) and major degradation between 200–450 °C (~60% for CMF2@GE; ~55% for CMF0@GE). Biocompatibility assessed by the SRB assay on human skin fibroblasts (HSF) showed >90% viability below 100 µg/mL CMF. Antibacterial performance was evaluated against Pseudomonas aeruginosa, Klebsiella pneumoniae, Staphylococcus aureus, and Enterococcus faecium. Disc/agar diffusion demonstrated dose-dependent zones of inhibition with CMF2 and CMF2@GE giving the largest ZOIs. MIC (resazurin) for CMF-2 ranged approximately 25– 100 µg/mL depending on the strain. Time-kill assays showed up to ~6-log CFU reductions within 60–120 min (fastest for P. aeruginosa and K. pneumoniae). Growth-curve kinetics and protein-leakage (Bradford) confirmed membrane disruption, highest with CMF-2. Biofilm assays (1, 3, 5 days) on cryogels demonstrated significant inhibition of adhesion and biomass, maximized in CMF2@GE. Hemostatic function measured by an in-vitro whole-blood clotting test showed that all CMF@GE sponges shortened clotting times versus the control; CMF2@GE achieved the shortest average time (~170–213 s), indicating rapid coagulation support. In summary, CMF@GE sponges combine biocompatibility, antibacterial activity, and accelerated hemostasis. Their scalable preparation (with clearly defined optimal chemistries: TPP 125 g/L, CaCl₂ 150 mM, glutaraldehyde 0.03%, GE at 50 °C) and robust performance position them as promising candidates for clinical wound care and infection control.
520		3	_aتتناول هذه الأطروحة تصميم وتصنيع وتقييم زهور الكيتوزان الدقيقة (CMF) المدمجة في إسفنجات الجيلاتين (GE) كضمادات جروح متعددة الوظائف تجمع بين الوقف السريع للنزيف والأداء المضاد للميكروبات واسع النطاق. تم إنتاج زهور الكيتوزان الدقيقة (CMF) من خلال مسار معدل أحادي الخطوة: التجليد الأيوني للكيتوزان مع ثلاثي فوسفات الكالسيوم (TPP) لتكوين مركبات نانوية من Cs–TPP، متبوعًا بنمو غير متناحٍ لفوسفات الكالسيوم على سطح الكيتوزان مدفوعًا بكلوريد الكالسيوم (CaCl₂) لإنتاج هياكل "زهور دقيقة". وقد أثبت التحسين المنهجي أن 150 ملي مولار من كلوريد الكالسيوم (CaCl₂) و125 غ/لتر من ثلاثي فوسفات الكالسيوم (TPP) هما التركيزان الأمثلان للحصول على زهور محددة جيدًا؛ إذ أن الانحراف عن هذا النطاق أدى إلى ظهور أشكال غير منتظمة وغير زهرية. تتضمن آلية التكوين تحلل ثلاثي فوسفات الصوديوم (TPP) إلى P₂O₇⁴⁻، ثم نمو صفائح Ca₂P₂O₇ على الكيتوزان، مما يؤدي إلى تكوين بتلات هرمية. تم دمج ألياف السليلوز الدقيقة (CMF) في الجيلاتين للحصول على إسفنجات CMF0@GE (الجيلاتين فقط)، وCMF1@GE، وCMF2@GE. تم تحضير محاليل الجيلاتين عند 50 درجة مئوية (في حمام مائي؛ حيث لم يكن التحضير في درجة حرارة الغرفة ممكنًا) وربطها عرضيًا باستخدام 0.03% من الغلوتارالدهيد قبل التجفيف بالتجميد. أظهرت صور المجهر الإلكتروني الماسح (SEM) شبكات مسامية مترابطة مع بتلات ألياف السليلوز الدقيقة موزعة في جميع أنحاء المادة الأساسية؛ وأكد تحليل طيف الأشعة السينية المشتتة للطاقة (EDS) وجود الكربون والأكسجين والصوديوم والفوسفور والكالسيوم (P ≈ 15.8%، Ca ≈ 9.5%)؛ وأكد تحليل حيود الأشعة السينية (XRD) وجود طور فوسفات الكالسيوم (Ca₃(PO₄)₂). انخفضت الكثافة، وزاد امتصاص محلول الفوسفات الملحي (PBS) ومساحة سطح BET مع زيادة تحميل ألياف السليلوز الدقيقة. أظهر تحليل الوزن الحراري (TGA) فقدانًا في الكتلة بنسبة 15% تقريبًا عند درجة حرارة 50-200 درجة مئوية (الماء المرتبط/الماء الحر) وتحللًا كبيرًا بين 200-450 درجة مئوية (60% تقريبًا لـ CMF2@GE؛ 55% تقريبًا لـ CMF0@GE). أظهرت دراسة التوافق الحيوي، التي أجريت باستخدام اختبار SRB على خلايا ليفية جلدية بشرية (HSF)، حيويةً تزيد عن 90% عند تركيز أقل من 100 ميكروغرام/مل من CMF. تم تقييم الأداء المضاد للبكتيريا ضد الزائفة الزنجارية، والكلبسيلة الرئوية، والمكورات العنقودية الذهبية، والمكورات المعوية البرازية. أظهر اختبار انتشار القرص/الأجار مناطق تثبيط تعتمد على الجرعة، حيث أعطى كل من CMF2 وCMF2@GE أكبر مناطق التثبيط. تراوح الحد الأدنى للتركيز المثبط (الريزازورين) لـ CMF-2 بين 25 و100 ميكروغرام/مل تقريبًا، وذلك حسب السلالة. أظهرت اختبارات القتل الزمني انخفاضًا في عدد المستعمرات البكتيرية يصل إلى 6 لوغاريتمات خلال 60-120 دقيقة (الأسرع بالنسبة لبكتيريا الزائفة الزنجارية وبكتيريا الكلبسيلة الرئوية). وأكدت حركية منحنى النمو وتسرب البروتين (برادفورد) تمزق الغشاء، وكان أعلى مستوى له مع CMF-2. وأظهرت اختبارات الأغشية الحيوية (1، 3، 5 أيام) على الهلاميات المبردة تثبيطًا كبيرًا للالتصاق والكتلة الحيوية، وكان أقصى ما يمكن في CMF2@GE. وأظهرت وظيفة الإرقاء المقاسة بواسطة اختبار تخثر الدم الكامل في المختبر أن جميع إسفنجات CMF@GE قللت من أوقات التخثر مقارنةً بالمجموعة الضابطة؛ وحققت CMF2@GE أقصر متوسط ​​وقت (170-213 ثانية تقريبًا)، مما يشير إلى دعم سريع للتخثر. باختصار، تجمع إسفنجات CMF@GE بين التوافق الحيوي والنشاط المضاد للبكتيريا والإرقاء المتسارع. إن إمكانية تحضيرها على نطاق واسع (مع تركيبات كيميائية مثالية محددة بوضوح: TPP 125 جم/لتر، CaCl₂ 150 ملي مولار، غلوتارالدهيد 0.03%، GE عند 50 درجة مئوية) وأدائها القوي يجعلها مرشحة واعدة للعناية السريرية بالجروح ومكافحة العدوى.
530			_aIssues also as CD.
546			_aText in English and abstract in Arabic & English.
650		0	_aBiotechnology
650		0	_aالتقنية الحيوية
653		1	_aHemostatic _aAnti-microbial _aCytotoxicity _aAerogel Derivatized
700	0		_aEmad El-Zayat _ethesis advisor.
700	0		_aMaher Z. El-Sabaa _ethesis advisor.
700	0		_aMehrez El-Naggar _ethesis advisor.
900			_b01-01-2025 _cEmad El-Zayat _cMaher Z. El-Sabaa _cMehrez El-Naggar _UCairo University _FFaculty of Science _DDepartment of Biotechnology
905			_aShimaa _eEman Ghareb
942			_2ddc _cTH _e21 _n0
999			_c178424